Par Patrick Pla, Université Paris-Saclay
La famille des ligands de type TGFβ et les voies de signalisation associées jouent un rôle fondamental dans de multiples processus cellulaires au cours du développement embryonnaire. Le rôle d’un seul membre de cette famille est souvent multiple (effets pleïotropiques) selon le principe général que les voies de signalisation sont souvent réutilisés de multiples fois au cours du développement dans des localisations différentes. Il faut les considérer comme des modules dont les entrées et les sorties dépendent largement du contexte.
TGFβ
Après excrétion par les cellules productrices, le ligand TGF-β est essentiellement présent sous une forme latente car associé à la protéine LAP. Une interaction avec des intégrines (αvβ8 ou αvβ6 par exemple) permet à TGF-β de prendre sa conformation active, de quitter LAP et de s’associer à ses récepteurs (Brown et Marshall, 2019).
La signalisation TGF-β passe par deux types de récepteurs transmembranaires à sérine-thréonine kinase. La liaison du ligand au récepteur TGF-β de type II (TβRII) stabilise la formation d’un complexe avec le récepteur TGF-β de type I (TβRI) et induit l’activation du récepteur TβRI par la kinase du récepteur TβRII. Les SMADs agissent alors comme effecteurs de signalisation. La phosphorylation C-terminale de SMAD2 ou SMAD3 par TβRI entraîne un changement de conformation qui favorise l’hétéromérisation avec SMAD4 et stimule la translocation nucléaire des complexes SMAD. Dans le noyau, les protéines SMAD régulent la transcription en se liant à l’ADN et en interagissant avec d’autres facteurs de transcription.

Cette interaction avec d’autres facteurs est nécessaire car les complexes SMAD ont une faible affinité pour l’ADN. Phospho-SMAD3 se lient directement à l’ADN avec SMAD4 au niveau d’éléments spécifiques de liaison à SMAD. Les complexes phospho-SMAD2-SMAD4, en revanche, ne se lient pas directement à l’ADN mais sont recrutés par d’autres facteurs de transcription, le premier caractérisé étant le facteur de transcription forkhead, FOXH1 (anciennement appelé Fast1) (Chen et al., 1996).
Le TGF-β régule la différenciation mésenchymateuse, inhibant la différenciation des ostéoblastes, des myoblastes et des adipocytes.

C’est SMAD3, et non SMAD2, qui médie cette inhibition par le TGF-β de la différenciation des ostéoblastes et des myoblastes. Dans ce dernier cas, Smad3 interagit physiquement avec MyoD et perturbe sa liaison à l’ADN, réduisant ainsi l’expression génique spécifique au muscle. Dans l’inhibition de la différenciation ostéoblastique médiée par le TGF-β, SMAD3 réprime la fonction de CBFA1 sans perturber sa liaison à l’ADN.
C’est encore SMAD3 qui inhibe la différenciation adipocytaire en aval de TGF-β. L’adipogenèse, activée par C/EBPβ ou C/EBPδ, est inhibée par TGF-β sans diminution des niveaux de protéine C/EBP. Les C/EBP interagissent physiquement à la fois avec SMAD3 et SMAD4, et cette interaction est corrélée à la répression de la transcription médiée par C/EBP au niveau des promoteurs des gènes codant des protéines essentielles pour la différenciation adipocytaire, avec des sites de liaison C/EBP multimérisés. Mais l’action de SMAD3 et SMAD4 n’affectent pas la liaison de C/EBP à ces séquences cibles. Ces données représentent le premier exemple d’inhibition directe de la fonction de transactivation d’un facteur de transcription par SMADs (Choy et Derinck, 2003).
D’une manière générale, la signalisation TGF-β a une fonction pro-matrice extracellulaire (MEC). Elle favorise le dépôt net de la matrice en augmentant l’expression de composants spécifiques de la MEC tels que la fibronectine et le collagène, en activant l’expression des inhibiteurs des protéases de la MEC tels que l’inhibiteur de l’activateur du plasminogène-1 (PAI-1) et les inhibiteurs tissulaires des métalloprotéinases matricielles (TIMPs), tout en diminuant l’expression des protéases qui dégradent les composants de la matrice, comme la collagénase interstitielle.

Comme nous le voyons sur la figure ci-dessus, l’activation de l’expression de la fibronectine passe par une voie de signalisation particulière, la voie de signalisation JNK. Une autre voie de signalisation, la voie p38 aboutissant à l’activation de ATF-2 et CREB ne semble pas impliquée (Hocevar et al., 1999).
Cette stimulation de la production de la MEC par TGF-β en fait un des acteurs majeurs de la fibrose où du tissu abîmé est remplacé généralement par des fibroblastes et de la MEC qui n’est pas fonctionnelle (Fragogiannis, 2020).
Dans certains contextes cependant, notamment cancéreux, la signalisation TGF-β peut au contraire stimuler la dégradation de la MEC via l’activation de l’expression des métalloprotéinases, notamment MMP-9. TGF-β agit à ce moment-là non pas par les SMAD mais par l’intermédiaire de TAK1 (pour TGF-β activated kinase) qui agit à son tour sur JNK et p38 comme cela a été démontré dans des cellules tumorales de cancer du sein (Safina et al., 2007).
BMP
Les membres de la famille BMP se distinguent des autres membres de la superfamille TGF-β en ayant sept (plutôt que neuf) cystéines conservées dans la protéine mature. Ils ont été d’abord caractérisés par leur capacité à faire différencier les ostéoblastes en ostéocytes mais leurs fonctions sont très variées. Signalons que malgré son nom, BMP1 est à part dans la famille, et est une protéase.
En général, les BMP agissent en tant qu’homodimères mais des hétérodimères ont aussi été caractérisés (BMP2/7 ou BMP4/7 par exemple) (Hazama et al., 1995; Bi et al., 2013).

Des pré-ostéoblastes sont soumis pendant 28 jours aux différents traitements puis une coloration rouge alizarine qui met en évidence la matrice extracellulaire osseuse (marqueur d’une différenciation des pré-ostéoblastes en ostéoblastes) est effectuée. ATRA = Acide rétinoïque tout-trans, une molécule impliquée dans la résorption osseuse et l’ostéoporose. Source : https://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0078198
Les voies de signalisation activées ressemblent à celles de TGF-β mais ce sont les SMAD-1, -5 et -8 qui sont activées et non pas les SMAD-2 et -3. SMAD4 est toujours impliqué.
Les BMP sont fortement impliqués dans la mise en place de l’axe dorso-ventral et antéro-postérieur chez les Vertébrés.


SMAD4 est commun entre la voie des BMP et la voie de Nodal (voir plus loin pour la voie Nodal). Chez le poisson-zèbre, BMP a besoin de SMAD4 en aval pour activer correctement ses gènes cibles alors que Nodal peut quand même activer ses propres gènes cibles via des voies de signalisation de compensation (Guglielmi et al., 2021).

Les ligands BMP peuvent être piégés dans l’espace intercellulaire et empêchés d’agir sur leurs récepteurs par diverses protéines sécrétées : Chordine, Noggin, Follistatine et Gremlin. Cette inhibition a des fonctions très importantes lors de la mise en place des axes, du contrôle de l’apoptose interdigitale ou lors de la formation du cortex (Ichinose et al., 2021).

La signalisation BMP peut aussi être modulée à la hausse ou à la baisse par différents acteurs intracellulaires. Smurf1 est une E3 ubiquitine ligase qui active la dégradation des récepteurs aux BMP ainsi que de SMAD1/5 (Murakami et Etlinger, 2019). Le recrutement de Smurf1 peut être facilité par SMAD6 et SMAD7 qui peuvent également se fixer sur les récepteurs BMP activés de type I et bloquer la phosphorylation des SMAD1/5/8 (Yan et al., 2009).
Bambi a, quant à lui, une structure très proche des récepteurs de type I de BMPR, mais a un domaine intracellulaire raccourci, sans aucune activité sérine/thréonine kinase. Il s’agit donc d’un pseudo-récepteur, qui joue un rôle de dominant-négatif en bloquant les interactions entre les récepteurs de type I et de type II (Ornichtchouk et al., 1999). Bambi bloque non seulement la signalisation BMP, mais aussi TGF-β et Nodal. Bambi interagit en plus avec le récepteur aux Wnt, Frizzled et aussi avec son effecteur Dishevelled et il facilite leur interaction, ce qui facilite l’activation de la voie canonique Wnt/β-caténine (Lin et al., 2008). On voit donc que Bambi inhibe la voie de signalisation BMP (et apparenté) pour activer une autre voie de signalisation concurrente, Wnt.
La calcineurine qui est une phosphatase activée par les ions Ca2+ est capable de déphosphoryler SMAD1/5 et donc d’inhiber la voie de signalisation BMP. Ce rôle a été démontré en aval des FGF qui activent une voie de signalisation menant à une augmentation de Ca2+ cytoplasmique et donc à l’activation de la calcineurine dans le futur tissu neural chez la souris (Cho et al. 2014). Ainsi, les FGF contribuent à l’induction neurale (en plus de Chordine et de Noggin qui capturent les BMP avant qu’ils n’atteignent leurs récepteurs).
FHL3 est, au contraire, une protéine qui facilite la signalisation BMP en stimulant la fixation des complexes SMAD1/5/8-SMAD4 sur les séquences régulatrices de ses gènes-cibles. Le gène codant Wnt8 est ainsi plus fortement activé en aval de la signalisation BMP en présence de FHL3 et cela permet de mieux induire de la bordure neurale dans un premier temps puis de mieux spécifier les cellules de crêtes neurales dans un deuxième temps (Alkobtawi et al., 2021).

SMAD1/5/8 peuvent avoir des fonctions indépendantes de SMAD4. Notamment, ils peuvent se fixer sur le complexe Drosha et accélérer la maturation de pri-miARN en microARN. C’est le cas pour le microARN miR-21 qui contrôle la différenciation des cellules musculaires lisses de la paroi des vaisseaux sanguins sous le contrôle des BMP.

Nodal
Les ligands de la famille Nodal empruntent en partie les mêmes voies que la signalisation TGFβ. Cependant, les récepteurs, les gènes cibles et les interactants régulateurs sont différents.

Source : https://en.wikipedia.org/wiki/Nodal_signaling_pathway#/media/File:Nodal_signaling.jpg
L’activine et Nodal partagent les mêmes récepteurs et activent les mêmes voies de signalisation. Souvent, on utilise l’activine plutôt que Nodal comme ligand pour des cultures in vitro car elle est plus facile à produire en tant que protéine recombinante.
La protéine Lefty est un antagoniste de Nodal et elle agit de 2 manières : en se fixant sur Nodal directement et en se fixant au co-récepteur Cripto et en empêchant l’interaction de Nodal avec lui de manière compétitive. Le gène codant Lefty est une cible de la voie de signalisation Nodal ce qui en fait un exemple classique de rétroaction négative. Les souris mutantes Lefty2-/- et les poissons-zèbres mutants perte-de-fonction pour Antivin (l’orthologue de Lefty) produisent trop de mésoderme et ont une ligne primitive trop étendue en conséquence d’une suractivation de la voie Nodal (Meno et al., 1999).

La signalisation Nodal est fortement active dans les cellules souches pluripotentes (ES ou iPS) en culture et est nécessaire au maintien de leurs propriétés. La différenciation de ces cellules s’accompagne souvent d’une baisse de la signalisation Nodal, liée entre autre à l’activation de l’expression de Lefty. Dans les cellules souches pluripotentes, l’expression de Lefty est réprimée par un microARN, miR-302. Si on surexprime ce microARN, l’expression de Lefty est plus faible que normalement et les cellules mettent plus de temps à se différencier. L’expression des gènes de pluripotence Nanog, Oct4 et Sox2 met plus de temps à s’éteindre (Barroso-DelJesus et al., 2011).
La voie de signalisation Nodal est essentielle pour mettre en place l’asymétrie droite-gauche. Elle est activée par un flux de liquide extracellulaire contrôlé par des battements ciliaires vers la gauche au sein de l’organisateur droite-gauche qui se trouve dans le plan de symétrie bilatérale et qui est dérivé du nœud de Hensen. La pression exercée vers la gauche active des mécanosenseurs ciliaires qui contiennent des canaux cationiques Pkd2 nécessaires à la mise en place de la polarité droite-gauche (Pennekamp et al., 2002). S’ensuit une entrée de Ca2+ dans le cytoplasme qui active une cascade de transduction aboutissant à l’inhibition de l’inhibiteur de la voie Nodal, Dand5 (aussi appelé Cerl2). Les ARNm de Dand5 sont dégradés plus rapidement sous l’action de la protéine Bicc1 activée par le Ca2+ (Nakamura et al., 2012, Maerker et al., 2021). La voie de signalisation Nodal peut ainsi agir et activer la transcription de Pitx2 (Yoshioka et al., 1998).
Bien que présentée ici de manière séparée, les signalisations Nodal et BMP peuvent être inter-dépendantes. Par exemple dans l’embryon de souris, Nodal dérivé de l’épiblaste induit la synthèse de BMP4 dans l’ectoderme extra-embryonnaire qui à son tour favorise l’expression de Nodal dans l’épiblaste (Robertson, 2014).
VOIR LES EXERCICES SUR LES VOIES DE SIGNALISATION
- Adhérence cellule-cellule
- Arabidopsis thaliana
- Axe antéro-postérieur chez la drosophile
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